（2）试剂：麻醉剂、固定液、生理盐水等。

（3）废物存放：有明显标志的黄色垃圾袋用于存放动物尸体和废弃脏器。锐器盒用于存放废弃针头、刀片、注射器等。

• 动物麻醉及处死过程要迅速，这是动物伦理的要求，也可避免动物组织出现死后自溶而影响实验结果的准确性。

• 取材时，对动物模型的外表及脏器进行肉眼观察并做实验记录。

• 对取材样本要熟悉，所有组织取材要迅速，对于易自溶组织，如肠道、腺体等要优先处理。

• 取材用的剪刀、刀片要锋利，镊子尽量不要使用齿镊，镊子不能直接夹住脏器组织，尽量用无齿镊夹住脏器周围结缔组织取材。

• 如无特殊要求，所选组织应尽量包括脏器全部层次结构或者重要结构。若相同器官取材时，选材部位应尽量保持一致。

• 剖检最好在设有解剖台的解剖室内进行，小动物可在大小适宜的搪瓷盘内剖检。剖检完毕，应及时对用具、场地进行严格消毒，特别对死于传染病尸体时，要严防病原扩散。

• 尸体及时收入冰柜，按医疗垃圾处理办法进行及时处理。

*注：动物尸检常被忽视的体表检查也是极其重要的，如四肢水肿提示动物生前患有心脏、肝脏、肾脏或关节炎症等疾病；尾巴坏死通常是外伤引起（夹伤、打斗等），也有可能是注射时损伤血管导致血液供应不足造成的坏死；天然孔如口腔、鼻孔周围有血液，常常是食道或上呼吸道损伤；肛门周围污秽则提示动物生前有腹泻现象，多患有肠道疾病等。

（1）消化系统

• 胃：大、小动物均于胃底长轴矢状切取材，长1~2cm，宽0~3cm，包括消化道全层。小动物包括前胃和腺胃。大动物包括贲门、幽门、大弯和小弯。有可视病变如胃炎、胃溃疡，应取病变组织和周围少许正常组织。

• 肠：分别在十二指肠逆行部和反迥部各取1块全层结构组织。小肠分别在空肠及回肠末端各取1块全层结构组织；大肠分别在结肠和直肠各取1块全层结构组织。所取材料应尽量保持肉眼标本的完整性， 一般取长度为1~2cm。

• 肝脏：在最大的肝叶各取1块组织（包括包膜），所选组织不宜太大。取材大小上，小动物为1.0cm*1.0cm*0.5cml，大动物3.0cm*2.0cm*0.5cm。但肝脏取材厚度不应超过0.5cm，否则固定液渗透不足，周定不够，影响脱水和切片，作免疫组化用途取材1.0cm*1.0cm*0.2cm。如有可视病灶取材，应包括病灶和其临近的正常组织两部分，可先切取大块，固定数小时至过夜，再修组织并换内定液继续固定。有胆囊的动物应取胆囊壁取组织。

• 胰腺：所取材料应尽量保持肉服标本的完整性，大小为1.5cm*1.5cm*0.2cm。

（2）呼吸系统

• 肺脏：取两肺下叶利肺尖部组织各一块（包括胸膜），大小为1.5cm*1.5cm*0.5cm。若有病变可根据病变人小与多少加取组织块。

（3）泌尿系统

• 肾脏：左石肾脏各取1块，选取的组织材料应包括肾脏主要结构，即皮质、髓质、肾乳头及被膜等各层结构。大小为1.5cm*1.5cm*0.5cm

• 膀胱：取膀胱织1块，包括全层结构，人小为1.5cm*1.5cm。若有可视病变，加取病变及周围组织。

（4）生殖系统

• 因生殖器官体积较小，可整体取材固定后，再分别取睾丸、附睾、前列腺（大动物）左外侧缘及中间部各一块。

• 子宫是一个中空脏器，官颈暴露了外界环境、易于发病且宫颈易发生肿瘤子宫体积较人，目药物对肌层、内膜均可能有影响，所以应取全层。子宫、宫颈（全层）及卵巢各取1块组织，大小为1.5cm*1.5cm*0.2cm。

（5）内分泌系统

• 甲状腺：因其较小，应整体取材，并用纱布包裹再固定，包括甲状旁在内。

• 肾上腺：左右肾上腺整体取材、固定。

（6）循环系统

• 心脏：左右心室各取一块组织，应包括瓣膜、心室壁各层结构及冠状动脉，大小为1.5cm*1.5cm*0.5cm。若疑有心脏传导系统病变时，应按其相应解剖部位取材检查。

（7）免疫系统

• 脾脏：脾脏是一个免疫器官，而现在很多疾病都利免疫功能有关，可引起脾脏增生等疾病，所以检查脾脏必不可少。取1~2块组织，包括包膜，大小1.5cm*1.5cm*0.5cm。有病变时加取病变组织。

• 淋巴结：一般取颈部、腋下、肠系膜淋巴结，其质地应与周围组织较易区分，用镊子将其与周围组织分离开，取出。较小淋巴结整体取材成定，较大淋巴结切取1.5cm*1.5cm*0.5cm的组织块。

• 胸腺：胸部器官取出前应先取出胸腺。胸腺组织易破坏，应特别小心。取胸腺组织一块并带包膜，大小为1.5cm*1.5cm*0.5cm。

（8）神经系统

• 大脑：大鼠和小鼠应整体取材，并用纱布包裹固定。对较大动物，如犬，应在两大脑中央前后区、海马及基底结等处各取1块，大小均为1.5cm*1.5cm*0.5cm。

• 小脑：小脑位于大脑半球的后方，经大脑横裂将人脑和小脑分开，取出小脑。小动物整体取材并用纱布包裹固定；大动物取1块组织，大小为1.5cm*1.5cm*0.5cm，包括小脑中间部。

• 垂体：从蝶骨垂体窝中取山垂体。注意动作一定要轻柔，以免破坏乖体。将平体整体取材，州纱布包裹后整体固定。

• 脊髓：自颅底至底椎沿背部中线切开皮肤，剥离棘突与椎板上的骨膜、软组织等，在靠近棘突两旁向下用锯垂直锯开，动作小心，勿损价脊髓。下端在荐椎利尾椎交界处横行锯开，用钳从上向下掀起已分离的棘突利椎板，暴露出硬脊膜，沿硬脊膜外切断各神经根，用镊子夹住硬脊膜向外轻拉，将硬脊膜和脊髓一起取出。然后沿脊髓前后正中线剪开硬脊膜，注入固定液。
  脊髓检查：固定数日后取出并彻底冲洗，在脊上作多个横断面，检查切面有无异常。
  脊髓取材：分别于颈、胸、腰阶段各取一段组织，长0.5cm。

①若发现肉眼可视病变，应认真观察并取准病变部位组织，切勿漏取，以确保全面反映组织病变全貌，并需由表及里地观察病变状况，测重量、记录部位、体重等。

②根据实验方法、目的、病变、特殊病变等要求，尽量多取材，选取的组织材料要包括各脏器的主要结构部分。

③应避免选取因解剖失误造成的凝血块和坏死组织等。

④取病理材料时勿压挤（组织变形）刮抹（组织缺损）、冲洗（红细胞和其他细胞吸水肿胀破裂）。

⑤所取材料应尽量保持肉眼标本的完整性，不宜过厚或过薄，建议选用1.5cm×1.5cm×0.5cm的取材规格。

⑥组织分离时，注意钝性分离不能用器械直接夹伤组织；脏器上附有血液、黏液等污物时，应用生理盐水冲洗后再固定，如果血液过多导致固定液变色时，应更换固定液。

⑦胃肠标本应将内容物冲洗干净再进行取材。

⑧肝肾等较大脏器可先将其切成较薄的块状组织固定，或是稍固定后再切成片状继续固定。

⑨垂体、肾上腺、甲状腺等小组织，应平铺于滤纸上再固定。

①常规HE染色，切片厚度需要根据不同组织类型而定。

②光镜下首先区分有否特异性病变及范围，然后由脏器一端向另一端进行整体观察和描述。

③观察小动物脏器有否肿大、增生，用10倍镜由一端开始计数该脏器包含的10倍镜镜头视野数，或计数整个切片中功能单位数。如脾生发中心、胸腺小叶、肝小叶、肾小球及整个切片中病变灶数量。

④大动物脏器疑有肿大、增生时，用40倍镜头计数每一视野中的细胞或功能单位数。心肌、骨骼肌在与长轴平行的切面上计数每一视野直径中的肌纤维数、肝小叶中肝细胞索数（数40倍镜视野的一半）。根据需要计数10~20个40倍镜视野。

⑤确定病灶大小后用40倍镜头进行观察。先将镜头的圆周与观察的病灶边缘相切，再观察该病灶在这一视野中的比例。

⑥实验动物肿瘤发生率的计算：动物肿瘤的组织分化常常不明显，在长期毒性试验或诱癌实验中出现的肿瘤，不论良性还是恶性，均计入肿瘤发生数，并计算肿瘤发生率。

电镜生物样品取材的正确与否，决定着实验结果的准确性。因此，电镜要求样品必须忠实地反映其生活时的状态，应尽量避免“死后改变”和“人为假象”的发生。

电镜取材时的注意事项有：

①取材部位要准确。器官、部位要准确，如观察肾小球需取肾皮质而不要取到肾髓质。

②动作迅速。活体（血供未断）取材，离体后需在1min内放入固定液（戊二醛）使组织尽可能保持原来的生活状态。

③材料体积要小。一般不超过1mm3使组织得到均匀而充分的固定，需要定向包埋的样品（如皮肤肌肉、血管等）应修成1mm×1mm×3mm。

④机械损伤要小。取材应用锋利、清洁的双面刀片（新刀片应用酒精去除刀锋上的油脂），尽量避免牵拉和挤压。

⑤低温。固定液4℃保存，取材所需器械应进行预冷，取材过程在冰盒上进行，取好的样品放在含固定液的小瓶中4℃保存，尽量降低酶的活性，减少细胞的损伤。